简易层析技术的临床意义有哪些薄膜电泳原理

家兔免疫血清 ??球蛋白分离与纯度鉴定 一、目的要求 1. 了解层析原理 2. 掌握醋酸纤维薄膜电泳技术 二、实验原理 层析技术是近代生物化学最常用的分离技术之一。它是利用混合物中各组分的理化性质(吸附力、分子形状和大小、分子极性、分子亲和力、分配系数等)的差异,在两相运动中,不断地进行交换、分配、吸附及解吸附等过程,可将各组分间的微小差异经过相同的重复过程而达到分离。配合相应的光学、电学和电化学检测手段,可用于定性、定量和纯化某种物质,其纯度高达99%。层析法的特点是分离率、灵敏度(pg-fg级)、选择性均高的一种分离方法。尤其适合样品含量少,而杂质含量多的复杂生物样品的分析。 无论哪种层析均由固定相和流动相组成。固定相可以是固体也可以是液体,但这个液体必须附载在某个固体物质上,该物质称载体或担体(Support)。同样流动相可以是液体也可以是气体。 层析技术的分类 一、按层析原理分类 吸附层析(Absorption Chromatography) 固定相是固体吸附剂,利用各组分在吸附剂表面吸附能力的差别而进行分离。 分配层析(Partition Chromatography) 固定相为液体,利用各组分在两液相中分配系数的差别或溶解度不同使物质分离。 离子交换层析(Ion Exchanger Chromatography) 固定相为离子交换剂,利用各组分对离子交换剂的亲和力不同而进行分离。 凝胶层析(Gel Chromatography) 固定相为多孔凝胶,利用各组分在凝胶上受阻滞的程度不同而进行分离。 亲和层析(Affinity Chromatography) 根据生物特异性吸附进行分离,固定相只和一种待分离组分有高度特异性的亲和能力而结合,而与无结合能力的其他组分分离。 二、按操作方式不同分类 纸层析(Paper Chromatography) 以滤纸作为液体的载体,点样后,用流动相展开,以达到组分分离目的。 薄层层析(Thin Layer Chromatography) 以一定颗粒度的不溶性物质,均匀涂铺在薄板上,点样后,用流动相展开,使组分达到分离。 柱层析(Column Chromatography) 将固定相装柱后,使样品沿一个方向移动,以达到分离目的。 层析中的常用术语 一、保留值(Retention Value) 保留值表示样品中各组分 在层析柱中停留时间的长短或 组分流出时所需流动相体积的 多少。它用来描述层析峰在层 析图上的位置(图3-1) 二、层析峰区域宽度(Peak Width) 有3种表示方法: 1、标准差 因分离过程中流出的曲线是正态分布曲线,两侧拐点之间的距离为2个标准差?。?的计算:流出峰到基线的距离为峰高的0.607倍,所以?点峰高0.607倍处为层析峰宽度的一半。?大,说明组分流出分散,层析峰宽度也大,是柱效不高的表现。反之,?小,表示组分在层析柱中集中,层析峰就窄,柱效也高。 2、半峰宽() =2.354? 3、峰宽(Wb) 是指通过层析峰两拐点作切线交于基线上的截距。Wb=4?。 三.分离度(Rs) 指相邻两峰的保留差值是两峰宽平均值的几倍(图3-2)。 若 Rs愈大,说明分离效果愈好。在实际分离过程中,各组分含量不同,因而峰面积和峰宽在绝大多数情况下是不一致的,故一般用垂直线法来计算。具体是连接两峰顶,再从两峰间的峰谷向基线作一垂线,此线和上述连线交于3处。从3到峰谷的距离为f,从3到基线距离为g (图3-3)。 四.分配系数 在层析分离过程中,物质既进入固定相,又进入流动相,此过程称分配过程。无论哪一种层析法,在一定条件下,物质在固定相和流动相达到平衡时,它在两相中平均浓度的比值称分配系数(K)。 分配系数是由溶质的性质(分子大小、电荷、分子量等)所决定的。不同的层析机制,其K值涵义不同。吸附层析中,K值表示吸附平衡常数;分配层析中,表示分配系数;离子交换层析中,表示交换常数;亲和层析中,表示亲和常数。K值大表示其溶质在固定相中浓度大,在洗脱过程中,溶质出现较晚。K值小表示其溶质在流动相中浓度大,故在洗脱液中出现较早。 若两组分在同一条件下具有相似的K值,则表明两组分层析峰重叠大,分离效果差。为达到分离目的,需重新选择实验条件,包括层析方式和流动相的改变。 五.柱效 无论哪一种层析过程都是

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血清清蛋白、γ-球蛋白的分离、提纯与鉴定-实验报告

内容发布更新时间 : 9:59:58星期一 下面是文章的全部内容请认真阅读。

生物化学与分子生物学实验教学中心

【实验报告第一部分(预习报告内容):①实验原理、②实验材料(包括实验样品、主要试剂、主要仪器与器材)、③实验步骤(包括实验流程、操作步骤和注意事项);评分(满分30分):

实验目的:1、掌握盐析法分离蛋白质的原理和基本方法

2、掌握凝胶层析法分离蛋白质的原理和基本方法 3、掌握离子交换层析法分离蛋白质的原理和基本方法 4、掌握醋酸纤维素薄膜电泳法的原理和基本方法 5、了解柱层析技术

实验原理:1、蛋白质的分离和纯化是研究蛋白质化学及其生物学功能的重要手段。

2、不同蛋白质的分子量、溶解度及等电点等都有所不同。利用这些性质的差别,可分离纯化各种蛋白质。

3、盐析法:盐析法是在蛋白质溶液中,加入无机盐至一定浓度或达饱和状态,可使蛋白质在水中溶解度降低,从而分离出来。蛋白质溶液中加入中性盐后,由于中性盐与水分子的亲和力大于蛋白质,致使蛋白质分子周围的水化膜减弱乃至消失。中性盐加入蛋白质溶液后由于离子强度发生改变,蛋白质表面的电荷大量被中和,更加导致蛋白质溶解度降低,蛋白质分子之间聚集而沉淀。

4、离子交换层析:离子交换层析是指流动相中的离子和固定相上的离子进行可逆的交换,利用化合物的电荷性质及电荷量不同进行分离。

5、醋酸纤维素薄膜电泳原理:血清中各种蛋白质的等电点不同,一般都低于pH7.4。它们在pH8.6的缓冲液中均解离带负电荷,在电场中向正极移动。由于血清中各种蛋白质分子大小、形状及所带的电荷量不同,因而在醋酸纤维素薄膜上电泳的速度也不同。因此可以将它们分离为清蛋白(Albumin)、α1-球蛋白、α2-球蛋白、β-球蛋白、γ-球蛋白5条区带。

实验材料:人混合血清 葡聚糖凝胶(G-25)层析柱

DEAE纤维离子交换层析柱 饱和硫酸铵溶液 醋酸铵缓冲溶液 20%磺基水杨酸 1oCl2溶液 氨基黑染色液 漂洗液 pH8.6巴比妥缓冲溶液 电泳仪、电泳槽

实验流程:盐析(粗分离)→葡聚糖凝胶层析(脱盐)→DEAE纤维素离子交换层析(纯化)→

醋酸纤维素薄膜电泳(纯度鉴定)

取血清0.8ml,边摇边缓慢滴加饱和硫酸铵溶液0.8ml,混匀室温放

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